Добавил:
kiopkiopkiop18@yandex.ru Вовсе не секретарь, но почту проверяю Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
5 курс / Инфекционные болезни / Доп. материалы / Раны_и_раневая_инфекция_Кузин_М_И_,_Костюченок_Б_М.pdf
Скачиваний:
2
Добавлен:
24.03.2024
Размер:
9.57 Mб
Скачать

вительность культур кишечной палочки к новым аминогликозидам.

Анализ приведенных материалов позволяет сделать вывод, что при лечении стафилококковой инфекции наиболее перспективными из современных антибиотиков являются фузидин, оксациллин, цепорин и современный антисептик диоксидин. Препаратами резерва остаются гентамицин и рифампицин. При лечении раневой инфекции, вызванной грамотрицательными бактериями, препаратами выбора являются антибиотики из группы аминогликозидов — гентамицин, сизомицин, тобрамицин, полусинтетический нени- циллин-карбенициллин, а также цефалоспорины второго и третьего поколения и антисептик диоксидин. При тяжелых формах грамотрицательной инфекции рекомендуются сочетания аминогликозидов с полусинтетическими пенициллинами и цефалоспоринами в соответствующих терапевтических дозах (см. главу 9).

5.4. КОМПЛЕКСНОЕ БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ БИОПТАТОВ ГНОЙНЫХ РАН

Методические принципы количественной бактериологии раневой инфекции позволили установить, что количественный показатель содержания бактерий в 1 г биоптата раны является объективным лабораторным тестом, отражающим характер течения раневого процесса и позволяющим врачу контролировать полноценность хирургической обработки гнойного очага. Количественные исследования микробов в расчете на 1 см 2 поверхности и на 1 г биоптата раны проводились по методике, разработанной L. Brentano (1965), С. P. Baxter и соавт. (1973), Е. С. Loeble и соавт. (1974) и модифицированной в лаборатории микробиологии и иммунологии Института хирургии им. А. В. Вишневского [Колкер И. И. и соавт., 1980].

Результаты многолетних клиникобактериологических исследований по-

зволили сформулировать концепцию о ведущей роли количественного фактора (количество микробов в 1 г биоптата раны) в развитии и генерализации раневой инфекции. В настоящее время метод комплексного бактериологического анализа биоптатов ран, включающий изучение видового состава и количества микробов, нашел широкое применение в клинической практике как один из наиболее информативных и объективных лабораторных показателей.

5.4.1. БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКИЙ КОНТРОЛЬ МИКРОФЛОРЫ ПРИ ХИРУРГИЧЕСКОЙ ОБРАБОТКЕ ГНОЙНЫХ РАН

Хирургическая обработка гнойных ран различного происхождения является основным методом их лечения.

Как показали наши исследования, видовой состав микрофлоры гнойных ран в процессе хирургической обработки существенно не изменялся, но наблюдались значительные колебания уровня бактериальной обсемененности ткани раны. Так, если до операции число бактерий менее 105 на 1 г ткани было у 52,3% больных, то после хирургической обработки раны у 87,8% оно стало ниже критического уровня. Последующая обработка раны пульсирующей струей раствора антисептика дополнительно снижала уровень обсемененности ран еще на 1—2 порядка. Таким образом, на завершающем этапе хирургической обработки уровень бактериальной обсемененности ран был минимальным: у 16,2% больных содержание бактерий в 1 г ткани раны составляло 10 ' —10 2, у 50%—менее 10 ', у 11,7% роста микрофлоры не обнаружено.

По нашим данным, уровень бактериальной обсемененности биоптатов ран в процессе операции является информативным показателем качества хирургической обработки гнойных очагов различной этиологии и коррелирует с клинической картиной и исходом заживления. Если содержа-

ние бактерий в ране становится зна-

неза и влияния на нее традиционных

чительно

ниже

критического уровня,

методов лечения таких ран под повяз-

то заживление ран, как правило, про-

ками и тампонами с антисептиками и

текает

без

осложнений, первичным

мазями.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

натяжением. В тех случаях, когда

 

В отделении ран и раневой инфек-

развивается нагноение ран, количе-

ции Института хирургии им. А. В. Ви-

ство бактерий в ране чаще всего со-

шневского разработан

и

применяется

ставляет более 10 5

на 1 г ткани.

 

 

 

новый,

 

бесповязочный

 

метод

лечения

 

Таким образом, имеется непосредст-

ран

в

 

управляемой

абактериальной

венная

зависимость между

уровнем

среде (УАС). Бактериологические ис-

бактериальной

обсемененности

ран,

следования воздуха внутри изолятора,

качеством хирургической обработки и

проводившиеся каждые 2—3 нед, не

последующим течением раневого про-

выявили роста микрофлоры, а при

цесса в гнойных очагах различного

помощи

 

счетчика

 

пылевых

 

частиц

происхождения.

 

 

 

 

 

 

 

 

A3-5 была установлена минимальная

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

степень

 

загрязненности

воздуха. Это

5.4.2. БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКИЙ

 

 

 

позволяет считать,

 

что в изоляторах

 

 

 

УАС

создается

практически

 

безми-

КОНТРОЛЬ МИКРОФЛОРЫ

 

 

 

 

 

 

 

 

 

кробная

 

среда.

Изучение

видового

ПРИ ЛЕЧЕНИИ ГНОЙНЫХ РАН

 

 

 

 

 

 

 

состава

 

 

микрофлоры

 

гнойных

ран

В УПРАВЛЯЕМОЙ

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

показало, что до лечения в УАС высе-

АБАКТЕРИАЛЬНОЙ СРЕДЕ

 

 

 

 

 

 

 

 

валась «обычная» микрофлора со зна-

 

Приведенные выше материалы ка-

чительным

преобладанием грамотри-

 

цательных бактерий (табл. 5.5). Уже

сались

микробиологической

характе-

через 5—7 дней значительно снижа-

ристики гнойных ран различного ге-

лась частота выделения грамотрица-

Изменение видового состава микрофлоры биоптатов гнойных ран при

 

 

 

 

 

 

Таблица 5.5

лечении их

в УАС

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

% больных

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Срок исследования

 

Staph.

 

 

Staph.

Str. spp.

 

Proteus

 

Coli—

 

 

Ps. ae-

 

грампо-

роста

 

 

 

epid.

 

 

aureus

 

 

 

spp.

 

Entero

 

 

rugi-

 

ложите-

микро-

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

bacter

 

nosa

 

льные

флоры

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

палочки

нет

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

До

лечения

 

 

 

 

 

 

12,1

 

46,2

6,1

 

 

22,7

23,5

 

49,2

4,5

 

 

 

В

процессе лечения:

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

через

5—7

сут

 

 

 

 

16,2

 

59,0

17,1

 

 

12,6

15,3

 

27,9

4,5

 

 

. 10—14

»

 

 

 

 

14,0

 

50,8

10,2

 

 

4,7

 

 

7,0

 

17,9

5,5

 

5,5

 

Уровни

бактериальной

обсемененности

гнойных

ран

при

 

 

лечении

в

 

 

 

 

 

 

Таблица 5.6

управляемой абактериальной среде (в %)

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Процент больных с содержанием микробов в 1

г ткани

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

менее 10 5

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

10 5

и более

 

 

 

Срок

исследования

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

роста

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

всего

микро-

 

10'

 

101—102

 

103—101

всего

 

105 —106

 

107 —109

 

 

 

 

 

 

 

 

 

флоры

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

нет

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

До лечения

в

УАС

 

46,9

 

 

16,1

22,6

 

 

61,3

 

53,1

 

 

61,4

 

 

38,6

 

В процессе лечения в УАС:

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

89,3

 

 

10,7

 

через

5—7

дней

 

74,8

 

3,7

 

26,5

 

 

9,6

 

 

60,2

 

25,2

 

 

 

 

 

 

»

10—14 .

 

90,6

 

9,5

 

31,9

 

 

9,5

 

 

49,1

 

 

9,4

 

 

91,7

 

 

8,3

 

тельных

бактерий,

которые

к

10—

гических исследований полностью со-

14-му дню лечения в УАС выделялись

впадают с клиническими наблюдения-

редко.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

ми, свидетельствующими о значитель-

В процессе лечения в УАС за ко-

ном сокращении

сроков

подготовки

роткий срок происходит существенное

ран к кожной пластике при лечении

снижение

 

бактериальной

 

обсеменен-

в УАС. Таким образом, результаты

ности ран (табл. 5.6). До лечения в

комплексного бактериологического об-

УАС уровень бактериальной обсеме-

следования могут служить информа-

ненности ран выше критического в

тивным

лабораторным

показателем

53,1%

случаев,

через

5—7

дней —

для оценки эффективности различных

только в 25,2% и через 10—14 дней

методов лечения гнойных ран.

 

лечения

в

90,6%

становился

ниже

 

 

 

 

 

 

 

10 5

в

1

г

ткани раны. При

этом

у

 

 

 

 

 

 

 

9,5%

больных

роста микрофлоры

не

5.5. МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ

обнаружено, а у 41,4% обсеменен-

АСПЕКТЫ НЕКЛОСТРИДИАЛЬНОЙ

ность ран была минимальной: у

31,9% — менее

10 ', у 9,5% — 10 '—

АНАЭРОБНОЙ ИНФЕКЦИИ

 

10

микробов на 1 г ткани.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

При сравнительном изучении уров-

За последние годы среди возбудите-

ня бактериальной обсемененности ран

лей гнойных хирургических инфекций

в зависимости от способа лечения

значительно возрос удельный вес так

установлено, что при лечении в УАС

называемых неклостридиальных

анаэ-

уже через 4—6 дней число микробов

робов. Интенсивное развитие техники

в тканях существенно снижается, в то

анаэробной

бактериологии позволило

время как при лечении традицион-

достичь определенных успехов в изу-

ными методами (под повязками) со-

чении

проблемы

неклостридиальной

держание бактерий в ранах до 20 суток

анаэробной

инфекции.

Эти

успехи

находится

на

критическом

уровне

связаны с этиологической расшифров-

(табл. 5.7).

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

кой указанных инфекций, проведением

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

клинико-бактериологических исследо-

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Таблица

5.7

 

ваний с целью определения критериев

Бактериальная обсемененность гнойных пост-

клинической диагностики, разработкой

оптимальных

 

методов хирургического

травматических ран при лечении в УАС и

 

методом повязок (М±т)

 

 

 

 

 

 

 

 

и антибактериального лечения, изуче-

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

нием механизмов

патогенеза неклост-

 

 

 

 

 

 

Число микробов ii

1 г ткани

 

 

 

 

 

 

ридиальной

анаэробной

инфекции

Срок исследования

 

 

 

 

 

 

 

 

 

лечение в

УАС

лечение под

[Столбовой А.

В.,

1981;

Finegold S.,

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

повязками

1977, 1980; Sutter V. et al., 1977,

1980].

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

До лечения

 

 

 

8-

10 5 ± 0 , 6 5

1-

1 0 6 ± 0 , 4 1

 

Облигатные

 

неспорообразующие

 

 

 

 

анаэробные

микроорганизмы прини-

В процессе лечения:

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

мают участие в развитии большинства

через

1—3

сут

 

2-

10 " + 0 , 4 1

4-

105

+ 0,64

 

 

»

4—И

дней

1-

10 3 + 0 , 3 1

3-

1 0 5 ± 0 , 4 8

 

гнойно-воспалительных процессов, в

 

»

13—20

сут

3-

К)2 + 0 , 3 8

3-

1 0 4 ± 0 , 3 9

 

том числе при раневой инфекции.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Значительную роль играют неклост-

Следовательно, при лечении в УАС

ридиальные анаэробы при инфекциях

мягких тканей [Gorbach S. et al., 1974;

уже на 4—6-й день создается возмож-

Finegold S.,

1980].

 

 

 

ность закрытия ран аутотранспланта-

Как

правило,

неклостридиальные

тами. При ведении ран под повязками

анаэробные инфекции имеют эндоген-

бактериальная

обсемененность

ран

ное происхождение, т. е. вызываются

снижается ниже критического уровня

неспорообразующими

анаэробами,

лишь к 21—40-му дню, что крайне

занимающими

доминирующее

поло-

затягивает сроки выполнения аутодер-

жение в нормальной микрофлоре че-

мопластики.

Результаты

бактериоло-

ловека. По данным S. Finegold

(1980),

среди

неспорогенных

анаэробов,

ляется весьма простым, но, на наш

имеющих

наибольшее

клиническое

взгляд,

получаемые

результаты

не

значение, в первую очередь выделяют

достаточно достоверны. В то же время

группу

неспорообразующих грамотри-

исследование в ультрафиолетовых лу-

цательных

палочек

(различные виды

чах обладает высокой достоверностью,

Bacteroides

и

Fusobacterium), группу

но дает возможность выявлять лишь

грамположительных кокков (Peptococ-

одну группу микроорганизмов (Bacte-

cus и Peptostreptococcus) и группу

roides

melaninogenicus).

 

Ускоренная

грамположительных

неспорообразую-

диагностика позволяла дать ориенти-

щих палочек (Bifidobacterium, Eubac-

ровочный ответ через 48 ч. Она вклю-

terium и др.). Основной особенностью

чает

анаэробное

 

культивирование

гнойно-воспалительных

заболеваний

нативного

материала

на

селективной

с

участием

неспорогенных анаэробов

желчно-эскулиновой среде с канами-

является их полимикробный характер,

цином для обнаружения группы Bac-

обусловленный как анаэробными, так

teroides fragilis, исследование пер-

и аэробными микроорганизмами [Gor-

вичного посева

в

ультрафиолетовых

bach

S., Bartlett J., 1974].

 

 

 

лучах,

предварительную

 

диагностику

 

Несмотря

на

достигнутые

успехи,

с учетом морфологии колоний, вырос-

многие вопросы диагностики, пато-

ших при первичном посеве в анаэроб-

генеза, клиники и лечения неклостри-

ных условиях, сравнительный

анализ

диальной анаэробной инфекции дале-

микрофлоры,

выросшей

 

при

посеве

ки от решения. В отечественной прак-

в аэробных условиях, и морфотипов

тике как для бактериологов, так и для

клеток в мазке из патологического

клиницистов проблема борьбы с не-

материала,

окрашенного

по

Граму.

клостридиальной

анаэробной

инфек-

Полное

бактериологическое

иссле-

цией — одна

из

наименее изученных.

дование занимало 5—7 дней. Посев

 

Мы располагаем данными исследо-

патологического

материала

произво-

вания

микробного

пейзажа

гнойных

дили на плотные и жидкие питатель-

ран 99 больных, у которых на осно-

ные среды. В качестве плотной среды

вании клинической картины предпола-

использовали кровяной агар для бак-

гали

неклостридиальную

анаэробную

тероидов (КАБ) с добавлением гемина

инфекцию. В зависимости от генеза

и витамина К, в качестве жидкой —

раны больные были разделены на три

среду, приготовленную на мясо-пептон-

группы: в первую включены больные

ном бульоне с добавлением ингреди-

с

посттравматическими

ранами,

во

ентов, входящих в состав КАБ, и ин-

вторую — с

 

первичными

гнойными

дикатора

анаэробиоза

 

резазурина.

ранами

и

в

третью — с

нагноением

Посевы инкубировали в микроана-

послеоперационных ран.

 

 

 

эростатах

отечественного

производ-

 

В

качестве

исследуемого материала

ства (модель 752), а также фирмы

использовали

биоптаты

раны

или

«Oxoid»

(Англия)

с

использованием

пунктаты содержимого гнойного оча-

трехкомпонентной

 

газовой

смеси

га, которые доставляли в лабораторию

2—10%, СО2—10%, N2

—80%) в

с

соблюдением

условий

анаэробиоза.

течение 48—72 ч при 37° С. Парал-

Для экспресс-диагностики использо-

лельно

проводили

 

культивирование

вали два метода: микроскопию натив-

патологического материала в аэроб-

ного материала, окрашенного по Гра-

ных условиях. Идентификацию не-

му с целью выявления морфологиче-

спорогенных

анаэробов

проводили

на

ски характерных типов, и исследо-

основании оценки комплекса свойств:

вание нативного материала в ультра-

морфологических,

 

культуральных,

фиолетовых

лучах

для обнаружения

биохимических,

тестов

антибиотико-

группы

Bacteroides

melaninogenicus.

чувствительности

 

и

толерантности.

Эти методы позволяли дать ориенти-

Анаэробные микроорганизмы найде-

ровочный ответ через 1—2 ч. Метод

ны у 73 из 99 обследованных. Харак-

микроскопии нативного материала яв-

терной

особенностью

 

микрофлоры

гнойных ран у этих больных являлась

ложительные палочки (см. табл. 5.8).

многокомпонентность

 

микробных

В анаэробном компоненте микрофло-

ассоциаций. Роль неспорообразующих

ры не отмечено каких-либо сущест-

анаэробов как единственного этиоло-

венных различий, связанных с генезом

гического фактора была незначитель-

раны. Однако у больных с послеопе-

на: лишь у 2 (2,8%) больных эти

рационными гнойными ранами наблю-

микроорганизмы

обнаружены

без

далась тенденция к более частому

аэробных ассоциантов. У 71 больного

выделению

бактерий

рода

Bacteroides

инфекционный процесс носил смешан-

по сравнению с грамположительными

ный аэробно-анаэробный характер.

кокками. Наиболее выраженные осо-

Микробный

пейзаж

был

представлен

бенности

в

спектре

 

неспорогенных

бактериальными ассоциациями, вклю-

анаэробов

обусловлены локализацией

чающими неспорообразующие анаэро-

гнойного очага. Бактерии рода Bacte-

бы, аэробные и факультативно-ана-

roides в 2 раза чаще, чем анаэробные

эробные

микроорганизмы,

а

 

также

грамположительные кокки выявлялись

спорообразующие

анаэробные

 

бакте-

при локализации гнойного очага в

рии рода Clostridium. Следует отме-

брюшной

стенке. Одинаковой была

тить,

что

последние

были

выделены

частота обнаружения этих двух групп

у И из 73 (15,1%) больных (табл. 5.8).

бактерий в гнойных очагах, располо-

У 3 больных они были единственными

женных в области нижних конечнос-

представителями

анаэробной

микро-

тей. Обратную зависимость мы на-

флоры, у 8 находились в ассоциации

блюдали при

расположении гнойного

 

с неспорогенными анаэробами и аэроб-

очага в мягких тканях грудной стенки,

 

ными

микроорганизмами.

Клиниче-

верхних конечностей, головы и шеи:

 

ские

проявления

клостридиальной

частота обнаружения грамположитель-

 

инфекции лишь у 2 больных.

 

 

 

 

ных анаэробных кокков была в 2 раза

 

Согласно

проведенным

исследова-

выше, чем Bacteroides.

 

 

 

ниям, основными представителями не-

Спектр

ассоциативной аэробной и

 

спорогенных анаэробов как в моно-

факультативно-анаэробной микрофло-

 

культуре, так и в ассоциациях явля-

ры был достаточно широк и включал

лись бактерии рода

Bacteroides

(Bac-

различных

представителей

семейства

 

teroides fragilis, Bacteroides melanino-

Enterobacteriaceae,

Ps.

aeruginosa,

 

genicus, Bacteroides spp.), которые об-

Acinetobacter,

Staph.

 

aureus,

Staph.

 

наружены у 51 (69,8%) больного, и

epidermidis, |3-гемолитический стреп-

 

грамположительные

кокки

(Peptococ-

тококк, энтерококк. Частота выявле-

 

cus, Peptostreptococcus),

найденные

у

ния грам отрицательной микрофлоры

 

43 (58,9%). У 16 больных из патоло-

составила

75,3%,

грамположитель-

 

гического материала выделены ана-

ной — 73,9%.

 

 

 

 

 

 

эробные

неспорообразующие

грампо-

Анализ структуры микробных ассо-

 

Микрофлора гнойных ран при неклостридиальной анаэробной инфекции

 

 

Таблица 5.8

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Частота обнаружения различных видов микроорганизмов

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

(число больных)

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

неспорообразующие анаэробные

 

спорообра-

аэробные

и факуль-

 

 

Вид раны

 

Всего

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

зующие

 

тативно-а *аэробные

 

 

 

 

 

 

 

 

 

грамотри-

 

грамполо-

грамполо-

 

анаэробные

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

цательные

 

 

(род Clostri-

грамотри-

грамполо-

 

 

 

 

 

 

 

 

(род

Bacte-

 

жительные

жительные

 

dium)

 

цатель-

житель-

 

 

 

 

 

 

 

 

 

roides)

 

кокки

палочки

 

 

 

ные

ные

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Посттравматическая

 

33

 

 

23

 

 

 

21

6

 

 

9

27

 

25

 

Первичная

 

 

 

21

 

 

 

12

 

 

 

12

3

 

 

1

13

 

17

 

Послеоперационная

 

19

 

 

 

16

 

 

 

10

7

 

 

1

15

 

12

 

И того...

 

 

 

73

 

 

51

 

 

 

43

16

 

 

11

55

 

54

 

 

 

 

 

 

 

 

 

(69,8%)

 

(58,9%)

(21,9%)

 

(15,1%)

(75,3%)

(73,9%)

циаций показал, что их многокомпо-

фекционном процессе, что тем не

нентность в большей мере обуслов-

менее

не

исключает

необходимости

лена

разнообразием

видов

аэробной

определения антибиотикограмм в це-

микрофлоры, нежели анаэробной. Как

лях

коррекции

антибиотикотера-

правило,

неспорогенные

анаэробы

в

пии. Кроме того, увеличивается число

микробной ассоциации были представ-

сообщений о повышении резистент-

лены 1—2 видами, и лишь у 14

ности различных видов неспорогенных

(19,2%) больных выделено 3—4 вида.

анаэробов к пенициллину, цефалоспо-

Аэробный компонент был представлен

ринам, тетрациклину, клиндамицину и

3—5 видами в 32,9% случаев. Высо-

нитроимидазолу. Как

было

показано,

кая частота обнаружения ассоциатив-

устойчивость к р-лактамным антибио-

ной аэробной микрофлоры и разно-

тикам

вызывается

плазмидами,

что

образие

ее

видов

свидетельствуют,

увеличивает

опасность

 

быстрого

что при гнойных заболеваниях мягких

распространения

резистентности к

тканей на основании только качест-

названным препаратам [Tally F., Мо-

венной

характеристики

микробного

lomy M., 1982; Railings L., 1982]. Это

пейзажа

нельзя

достаточно

полно

обстоятельство

обусловливает необхо-

оценить

роль

неспорообразующих

димость постоянного контроля анти-

анаэробных микроорганизмов как ве-

биотикочувствительности

неспороген-

дущего этиологического фактора.

 

ных анаэробов, так как в противном

Мы попытались в качестве косвен-

случае

эмпирическая

терапия

может

ного критерия применить количествен-

оказаться неэффективной.

 

 

 

ные

характеристики,

в

частности

Сложность антибактериальной тера-

определение количества аэробных бак-

пии инфекций с участием неспороген-

терий

в

биоптате

раны

в

расчете

на

ных анаэробов связана с тем, что эти

1 г ткани. У 24 из 56 (42,9%) больных

инфекции, как правило, имеют поли-

этот показатель не превышал крити-

микробный

характер,

обусловленный

ческого уровня, т. е. был меньше 105

как анаэробным, так и аэробным ком-

микробов в 1 г ткани. По-видимому, у

понентами. Вместе с тем известно,

этих больных при наличии выражен-

что антибактериальные спектры

ряда

ной

клинической

картины

главную

антибиотиков, широко используемых в

этиологическую роль в инфекционном

практике,

для

аэробов

и

анаэробов

процессе могут играть неклостри-

не совпадают. Это относится, в част-

диальные анаэробы. У 32 (57,1%)

ности,

к

аминогликозидам,

которые

больных содержание аэробных бакте-

неактивны в отношении неспороген-

рий

соответствовало

критическому

ных анаэробов, к цефалоспоринам и

уровню либо превышало его. Вероят-

пенициллинам, неактивным в отноше-

но, у этих больных в развитии заболе-

нии Bacteroides fragilis. Линкомицин,

вания основное значение имеет слож-

клиндамицин,

метронидазол,

обычно

ное синергидное взаимодействие ана-

используемые при лечении анаэроб-

эробных и аэробных микроорганиз-

ных инфекций, неактивны в отноше-

мов. Следует подчеркнуть, что взаимо-

нии энтеробактерий [Persival A. et al.,

отношения аэробных и неклостри-

1978]. Все это свидетельствует о необ-

диальных анаэробных бактерий в ин-

ходимости

использования

сочетания

фекционном

процессе

представляют

антибиотиков, направленных на ана-

чрезвычайно

сложную

и

требующую

эробный и аэробный компоненты мик-

дальнейшего

изучения проблему.

 

робной ассоциации.

 

 

 

 

 

Подход к антибактериальной тера-

Большинство

исследователей

 

отме-

пии инфекций, вызываемых неспоро-

чают некоторые различия между ан-

генными анаэробами, имеет некоторые

тибактериальными

спектрами

 

грам-

особенности.

Прежде

 

всего — это

отрицательных

 

неспорообразующих

«эмпирическое» назначение антибакте-

анаэробов родов Bacteroides и Fuso-

риальных препаратов после того как

bacterium и анаэробных кокков, как

установлено

участие

анаэробов в

ин-

грамположительных, так

и

грамотри-

дательных. В табл. 5.9 представлены

цефокситин

активен

в отношении

данные о чувствительности этих бак-

Bacteroides fragilis. Из десяти пере-

терий к ряду антибиотиков [Watt В.,

численных в табл. 5.9 препаратов эти

1979].

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

бактерии

высокочувствительны лишь

 

Необходимо

особо

 

остановиться

на

к пяти: клиндамицину, хлорамфени-

чувствительности

к

 

 

антибиотикам

колу, карбенициллину,

метронидазолу

Bacteroides fragilis. Среди неспорооб-

и цефокситину. По мнению большин-

разующих анаэробов этот вид являет-

ства исследователей, препаратами, об-

ся наиболее устойчивым к широкому

ладающими в отношении неспороген-

кругу антибиотиков, что имеет боль-

ных анаэробов наибольшей актив-

шое

значение

ввиду

значительной

ностью, являются: пенициллины (кро-

 

частоты обнаружения его в патологи-

ме

Bacteroides

fragilis),

клиндамицин,

 

ческом материале. Устойчивость Bac-

линкомицин,

хлорамфеникол, цефок-

 

teroides fragilis к Р-лактамным анти-

ситин, метронидазол

 

[Finegold

S.,

 

биотикам (пенициллины,

цефалоспо-

1977; McCloskey R.,

1979].

 

 

 

 

рины) объясняется действием |3-лак-

Изучение чувствительности к анти-

 

тамаз, образуемых этими бактериями.

бактериальным препаратам, проведен-

 

Только устойчивый к Р-лактамазам

ное нами на клинических штаммах

 

Активность антибактериальных препаратов в отношении клиничесга зна-

 

 

 

 

 

Таблица Ь.Ь

 

чимых

неспорогенных анаэробов

[Watt В.,

1979]

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Другие

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Другие

 

 

 

 

Анаэроб-

 

 

 

 

 

 

 

грамотри-

 

 

 

 

Анаэроб-

 

 

 

 

грамотри-

 

 

 

 

ные кокки

 

 

 

 

 

 

 

цательные

 

 

 

 

ные кокки

 

 

 

 

цательные

 

 

 

 

 

(грампо-

Bacteroi-

анаэроб-

 

 

 

 

(грампо-

Bacteroi-

анаэроб-

 

Антибиотики

 

ложитель-

 

des fragi-

 

ные бакте-

 

Антибиотики

 

ложитель-

 

des

fragi-

ные бакте-

 

 

 

 

ные и гра-

 

 

lis

 

 

 

рии (Вас-

 

 

 

 

ные и гра-

 

 

 

lis

рии

(Вас-

 

 

 

 

мотрица-

 

 

 

 

 

 

 

teroides

 

 

 

 

мотрица-

 

 

 

 

teroides

 

 

 

 

тельные)

 

 

 

 

 

 

 

spp., Fuso-

 

 

 

 

тельные)

 

 

 

 

spp., Fuso-

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

bacterium)

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

bacterium}

 

Пенициллин

 

 

+

+ +

 

Устой-

 

 

 

 

 

Хлорамфеникол

 

+ + +

 

 

 

+ + +

+ + +

 

 

 

 

 

 

 

 

 

чивые

 

 

 

 

 

 

 

Тетрациклин

 

 

+

 

 

 

 

 

+

+

 

 

Эритромицин

 

 

+

+

 

 

+

 

 

 

+ +

 

 

Карбенициллин

 

+ + +

 

 

 

+

+ +

+

+

 

 

Линкомицин

 

 

+ + +

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Цефалоспорины

 

+ + +

 

 

 

 

+

+ + +

 

 

Клиндамицин

 

 

+

+

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Цефокситин

 

 

+ + +

 

 

 

+ + +

 

 

 

 

Метронидазол

 

 

+ + +

 

 

 

 

 

 

 

+ + +

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

П р и м е ч а н и е .

-|

 

 

слабая

активность,

 

 

 

умеренная

активность,

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

+ + И

 

 

хорошая активность.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

грамположительных кокков, показало,

при

определении

чувствительности к

 

что все изученные культуры прояв-

актибактериальным препаратам грам-

 

ляли

высокую

чувствительность

 

к

отрицательных

 

 

неспорообразующих

 

большинству

используемых

препара-

анаэробных бактерий рода Bacteroi-

 

тов: пенициллину, ампициллину, кар-

des,

свидетельствуют

о

наибольшей

 

бенициллину, эритромицину, левомице-

активности в отношении этих микро-

 

тину,

диоксидину. К

метронидазолу

организмов левомицетина, линкомици-

 

было

чувствительно

84,6%

 

 

культур.

на,

метронидазола,

 

карбенициллина,

 

Наименьшая

 

активность

отмечена у

эритромицина и диоксидина. В целом

 

тетрациклина

 

 

и

 

линкомицина —

следует отметить, что данные по

 

61,5% чувствительных штаммов. Про-

антибиотикочувствительности

неспо-

 

цент чувствительных штаммов к це-

рогенных

анаэробных

микроорганиз-

 

фалоспоринам

(цепорин,

цефамезин,

мов в отношении значительного числа

 

цефалотин) варьировал между 77,0 и

антибиотиков существенно варьируют.

 

84,6%. Все изученные штаммы были

Одной из возможных причин этого, по-

 

устойчивы к аминогликозидам. Пред-

видимому, являются отсутствие стан-

 

варительные

результаты,

полученные

дартизации в

используемых

методах.

Дальнейшее совершенствование и уни-

путями: дыхательные пути носите-

фикация методов определения анти-

ля — воздух — рана, дыхательные пу-

биотикочувствительности

неспороген-

ти носителя — его руки — рана, дыха-

ных анаэробов является важным эта-

тельные

пути

носителя — используе-

пом, способствующим успешной тера-

мые

предметы — кожа

больного —

пии

инфекций, вызываемых этими

рана [Чистович Г. Н., 1969].

микроорганизмами.

 

 

Признавая важную роль воздушной

 

 

 

 

 

 

среды (особенно в палатах и перевя-

 

 

 

 

 

 

зочных) как возможного пути рас-

5.6. ВНУТРИГОСПИТАЛЬНАЯ

 

пространения

патогенных

стафило-

ИНФЕКЦИЯ

 

 

 

кокков

в

хирургических

стационарах,

 

 

 

следует особо отметить значение кон-

В настоящее время этот вопрос

тактного пути заражения через руки

приобрел особую актуальность [Беля-

медицинского персонала и загрязнен-

ков В. Д. и др., 1976; Лошонци Д.,

ные объекты внешней среды.

1978]. Прежде всего заслуживает рас-

Бактериологические исследования в

смотрения проблема внутригоспиталь-

хирургических

стационарах

показали,

ной инфекции в отношении установле-

что предметы обихода, белье, одеяла,

ния основных источников и путей рас-

мебель и сами помещения часто инфи-

пространения стафилококков в хирур-

цированы патогенными стафилококка-

гических

стационарах.

Источниками

ми, которые, как известно, весьма

их распространения могут быть как

устойчивы к внешним воздействиям и

больные, так и медицинский персонал.

могут

длительное

время

сохраняться

Не исключая возможности эндогенного

на различных объектах. Выживае-

инфицирования больных, все исследо-

мость

патогенных

стафилококков на

ватели признают ведущую роль экзо-

белье, полотенцах, салфетках и дру-

генного их инфицирования во время

гих предметах обихода при комнатной

пребывания в стационарах, что и

температуре

весьма продолжительна

обусловливает

развитие

«стафилокок-

(35—50 дней), на процедурных сто-

кового госпитализма». В клиниках об-

лах, стенах, других предметах твер-

щехирургического профиля при на-

дого инвентаря десятки дней [Смирно-

личии большого контингента больных

ва А. М. и др., 1977].

 

 

с различными гнойно-воспалительны-

Отмечая важную роль стафилокок-

ми заболеваниями главную роль в рас-

ков как одного из основных возбуди-

пространении

стафилококковой

ин-

телей

внутригоспитальных

инфекций,

фекции играют в первую очередь

необходимо подчеркнуть, что в послед-

больные. Гнойные раны являются мас-

ние годы среди возбудителей внутри-

сивным резервуаром, откуда патоген-

больничных

 

инфекций

значительно

ные

стафилококки контактным

или

возрос удельный вес грамотрицатель-

воздушно-капельным путем распрост-

ных микробов семейства Enterobacte-

раняются по хирургическому стацио-

riaceae и рода Pseudomonas. Если в

нару. Вот почему обязательна строгая

50-х годах среди возбудителей внутри-

изоляция таких больных.

 

больничных

 

инфекций

преобладали

Важным источником распростране-

стафилококки

 

(«стафилококковая

ния патогенных стафилококков в хи-

внутрибольничная чума»), то с конца

рургических

стационарах являются

60-х годов непрерывно возрастает час-

«злостные» носители из числа боль-

тота

внутрибольничных

 

инфекций,

ных и медицинского персонала, так

вызванных

грамотрицательными бак-

как именно они служат основным ре-

териями

[Finland

M.,

1975; Grave-

зервуаром

патогенных стафилококков

nitz A., 1975]. В настоящее время час-

в коллективах. Патогенные стафило-

тота

внутрибольничных

 

инфекций,

кокки локализуются главным образом

вызванных грамотрицательными мик-

в верхних дыхательных путях, откуда

робами, возросла, например, в США

происходит

заражение

различными

и ФРГ в 14 раз. Они явились возбу-

дителями 60% внутрибольничных инфекций, зарегистрированных в этих странах. Особенно повысился удельный вес синегнойной палочки, которую стали выделять как возбудителя различных по клинической форме внутрибольничных инфекций в 2,2 раза чаще [Alexander J. et al., 1976].

Основными возбудителями внутрибольничных инфекций в последние годы стали полирезистентные штаммы Pseudomonas, Klebsiella, Proteus, Escherichia и других представителей семейства Enterobacteriaceae. Сравнительный анализ основных возбудителей внутригоспитальных инфекций показал уменьшение за последние годы частоты выделения стафилококков и стрептококков и значительное возрастание частоты выделения микробов группы Klebsiella — Enterobacter и особенно Ps. aeruginosa. В последние годы и в нашей стране отмечается возрастание удельного веса грамотрицательных микробов среди возбудителей гнойных осложнений после хирургических вмешательств [Беляков В. Д. и др., 1976; Квачук Г. Н., 1977].

Одним из основных возбудителей современных внутригоспитальных инфекций среди представителей грамотрицательных бактерий является синегнойная палочка. По данным J. Bennett (1974), из 90 000 больных, находившихся на лечении в госпиталях общей хирургии, внутрибольничная инфекция, вызванная синегнойной палочкой, была зарегистрирована у 544, т. е. практически около 7 больных из 1000 госпитализированных страдают от внутригоспитальной синегнойной инфекции.

Высокая полирезистентность синегнойной палочки к основным антибактериальным препаратам затрудняет борьбу с ней. Несмотря на комплексную антибактериальную терапию, летальность при генерализованной синегнойной инфекции достигает 70— 90% [Попкиров С, 1977].

При рассмотрении эпидемиологических аспектов проблемы внутрибольничных грамотрицательных инфекций особого внимания заслуживает вопрос

об источниках и путях распространения грамотрицательных микробов (в частности синегнойной палочки) в хирургических стационарах. Если в отношении стафилококков известно, что основным местом их обитания является слизистая оболочка носа и что почти 50—60% практически здоровых людей являются носителями стафилококков и могут стать источником внутрибольничных инфекций, то вопрос об источниках обитания грамотрицательных микробов мало изучен. По мнению исследователей, основное место обитания синегнойной палочки — желудочно-кишечный тракт человека. С фекальными загрязнениями синегнойная палочка попадает в окружающую среду (почва, вода, пища, объекты внешней среды). Однако частота выделения синегнойной палочки из кишечника практически здоровых людей колеблется в пределах — от 0 до 20% и более высокого уровня [Komminos S. D. et al., 1977].

При обследовании практически здоровых людей установлено, что здоровая кожа и верхние дыхательные пути в норме синегнойной палочкой не заселены. Более того, синегнойная палочка, нанесенная на поверхность здоровой кожи, быстро погибает, а влажные участки кожи (подмышечная область, пролежни) могут стать источником размножения синегнойной палочки [Lowbury J., 1975].

Очень важен, но практически почти не изучен вопрос о путях передачи грамотрицательных микробов, в частности синегнойной палочки, в хирургических стационарах. Если в отношении стафилококков ряд исследователей на первое место выдвигают воз- душно-капельный путь инфицирования, то для грамотрицательных микробов значение этого пути неясно. Как известно, синегнойная палочка весьма неустойчива к высушиванию и ее крайне редко находят в воздухе. По мнению J. Lowbury (1975), в гнойных отделениях вообще и в ожоговых в частности, воздушно-капельный путь инфицирования вполне реален. Несом-

ненно, что вопрос о роли воздушнокапельного пути инфицирования при грамотрицательных внутригоспитальных инфекциях требует дальнейшего всестороннего изучения и главное при исследовании воздушной среды необходимо применение новых приборов и селективных сред, особенно жидких.

Признавая возможность эндогенного распространения внутригоспитальной синегнойной инфекции (аутоинфицирование больных при резком снижении активности факторов антиинфекционной защиты), большинство исследователей все же основное значение придают экзогенному пути инфицирования. Особенно важную роль в качестве возможных источников синегнойной инфекции играют больные с инфицированными гнойными ранами. Именно из этих источников происходит инфицирование постельного белья, перевязочного материала, рук санитарок и медицинских сестер, и таким путем синегнойная палочка может переноситься к вновь поступающим больным. Полагают, что контактный путь передачи синегнойной палочки от больного к больному через руки обслуживающего персонала — один из наиболее вероятных путей передачи ее в клиниках, особенно общей хирургии. По данным J. Lowbury (1975), половина санитарок и медицинских сестер в гнойных отделениях являются носителями синегнойной палочки на руках и контактным путем инфицируют вновь поступающих больных. В общем комплексе противоэпидемических мероприятий по борьбе с синегнойной инфекцией особое внимание необходимо уделять обработке рук обслуживающего персонала дезинфицирующими средствами, эффективными против синегнойной палочки.

Учитывая способность синегнойной палочки длительное время сохраняться и даже размножаться во влажной среде, в стационарах дополнительными резервуарами этого микроба становятся раковины и оборудование для водной терапии, различные растворы и даже антисептики, содержащие соединения четвертичного аммония,

кремы для рук и стероидные кремы. Наконец, необходимо указать на важную роль наркозной и дыхательной аппаратуры как дополнительных источников инфицирования больных. Вот почему отделения интенсивной терапии — одно из наиболее возможных мест инфицирования больных в послеоперационном периоде. По данным В. Л. Олейник и Н. И. Фоминой (1977), в 20% смывов (преимущественно из влажных мест) в реанимационных палатах была выделена синегнойная палочка. Культуры, выделенные из раневого отделяемого, по групповой принадлежности и отношению к антибиотикам соответствовали штаммам, выделенным с объектов внешней среды. Наиболее часто синегнойная палочка выделялась из отсосов, респираторов и воздуховодных трубок, поэтому весьма вероятно инфицирование больных синегнойной палочкой через оборудование реанимационных палат. Необходимо разработать средства и методы более эффективной стерилизации наркозной и анестезиологической аппаратуры, подвергающейся частому увлажнению в реанимацион-

ных отделениях.

Приведенные материалы показывают, насколько актуальна разработка эффективных дезинфицирующих средств для борьбы с внутригоспитальной инфекцией. К сожалению, методы и средства, принятые при борьбе со стафилококковой инфекцией, в отношении синегнойной инфекции оказались недостаточно эффективными вследствие высокой устойчивости этого микроорганизма к дезин-

фекционным средствам. По

данным

Д. М. Суровикина (1973),

в борьбе

с синегнойной инфекцией

наиболее

эффективны дезинфицирующие средства, как борная и муравьиная кислота, перманганат калия, дегмициды.

Анализ приведенных материалов свидетельствует о большом значении синегнойной инфекции как типичной внутрибольничной инфекции хирургических, ожоговых, акушерских и других стационаров и о необходимости изучения этой проблемы.

Соседние файлы в папке Доп. материалы