Источник и механизмы заболевания.

Резервуарами (носителями) возбудителя чумы в природе являются дикие, синантропные и домашние животные (около 300 видов), особенно грызуны – крысы, сурки, суслики, полевки, песчанки. Основное значение имеют серые и черные крысы.

Человек заражается трансмиссивно (через укусы инфицированных блох), контактным путем (при контакте с инфицированными животными, разделке туш, снятии шкурок) и алиментарным путем (при употреблении в пищу плохо проваренного инфицированного мяса). От людей, больных легочной формой чумы, происходит аэрогенное заражение (воздушнопылевой и воздушно-капельный пути).

Микробиологическая диагностика.

Материалом для исследования служат пунктаты бубонов, мокрота, отделяемое язв, кровь, моча, кал, рвотные массы, трупный материал.

Микроскопическое исследование: мазки фиксируют погружением полностью в жидкость Инпифорова на 20 мин. Окраска по Граму обязательна во всех случаях. Одновременно окрашивают мазок метиленовым синим Леффлера, так как этот метод луч­ше выявляет биполярность.

2. Бактериологическое исследование:

Первый день:

- выявление в материале чумных микробов путем микроскопии мазков, приготовленных из исследуемого материала и окрашенных по Граму, метиленовым синим и специфической люминесцирующей сывороткой;

- обнаружение в материале фракции I чумного микроба с помощью РПГА с иммуноглобулиновым диагностикумом или реакции нейтрализации антител (РНАт) с антигенным диагностикумом;

- выделение чистой культуры чумного микроба путем посева материала на плотные и в жидкие питательные среды;

- биопроба на морских свинках и белых мышах.

Второй день:

- изучение характера роста культуры на питательных средах, приготовление, окраска и микроскопия препаратов;

- пересев подозрительных колоний для выделения чистой культуры.

Третий день:

- идентификация чистой культуры по характеру роста на питательных средах, специфическому свечению при люминесцентной микроскопии, по наличию фракции I в РПГА;

- изучение ферментативной активности – расщепление глицерина, рамнозы, сахарозы, глюкозы и других углеводов;

- определение чувствительности культуры к чумному бактериофагу (Л-413, Покровской);

- определение чувствительности выделенной культуры к антибиотикам методом дисков.

Четвертый день:

- учет результатов и выдача заключения.

3. При культуральном исследовании проводят выделение чистой культуры и ее идентификацию. С этой целью исследуемый материал высевают на питательные среды (МПА, МПБ, агар Мартена). Культивирование проводят при температуре 28ОС в течение 12-20 часов

3. Биологическая проба обязательна при исследовании; наиболее чувствительными из лабораторных животных являются мор­ские свинки и белые мыши. Для постановки биологической пробы животных заражают внутрибрюшинно, подкожно или внутрикожно, а в случае загрязнения материала посторонней микрофлорой — втиранием в скарифицированную кожу. В зависимости от способа заражения и степени чувствительно­сти к возбудителю животные погибают от чумы на 3—9-й день после инфицирования, изменения во внутренних органах в ви­де геморрагического воспаления, кровоизлияния: в мазках-отпечатках из органов — множество чумных микроорганизмов; посевы инфицированных органов и крови дают обильный рост возбудителя.

5. В качестве аллергического метода диагностики проводят кожную пробу с пестином. Аллергическая проба относится к методам ретроспективной диагностики.

6. В качестве экспресс-диагностики используют фагодиагностику, ПЦР, РИФ. Например, реакция иммунофлюоресценции позволяет поставить предварительный диагноз уже через 2 часа

В диагностике чумы используют также чумной бактериофаг.