- •Список сокращений
- •Оглавление
- •Глава 2. Материалы и методы исследования 29
- •Глава 3. Получение криоконсервированной культуры эмбриональных клеток свиной печени для ксенотрансплантации 41
- •Глава 4. Оценка эффективности ксенотрансплантации криоконсервированной культуры клеток эмбриональной печени в коррекции острого токсического повреждения печени 54
- •Глава 5. Структурная оценка влияния ксенотрансплантации культуры эмбриональных клеток печени 69
- •Введение
- •Применение клеток печени для коррекции острой печеночной недостаточности (обзор литературы)
- •1.1 Способы клеточной метаболической поддержки в коррекции печеночной недостаточности
- •1.2. Способы коррекции острой печеночной недостаточности в эксперименте
- •1.2.1. Моделирование острой печеночной недостаточности
- •1.2.2. Механизмы острого токсического повреждения печени при введении сСl4
- •1.2.3.Критерии эффективности метаболической клеточной коррекции опн
- •1.3. Трансплантация гепатоцитов в коррекции острой печеночной недостаточности
- •1.3.1. Способы приготовления гепатоцитов для трансплантации
- •1.3.2. Криоконсервация
- •1.3.3.Приготовление препарата для ксенотрансплантации
- •1.3.4. Способы ксенотрансплантации
- •Глава 2. Материалы и методы исследования
- •2.1 Общая характеристика экспериментального материала
- •2.2.2.1. Культура клеток печени
- •2.2.2.2. Приготовление ткани плаценты для ксенотрансплантации
- •2.2.2.3.Приготовление питательной среды для инъекции
- •2.2.3. Методы лабораторного контроля
- •2.2.3.1.Определение массы печени
- •2.2.3.2.Определение биохимических показателей сыворотки крови
- •2.2.3.3.Исследование показателей системы гемостаза
- •2.2.4.Методы морфологического исследования
- •2.3.Методы статистической обработки
- •Глава 3. Получение криоконсервированной культуры эмбриональных клеток свиной печени для ксенотрансплантации
- •3.1.Технология получения культуры клеток печени
- •3.1.1 Дезагрегация печеночной ткани
- •3.1.2. Оптимизация рН среды для культивации клеток
- •3.1.3 Очистка и культивирование эмбриональных клеток свиной печени
- •3.2.Консервация клеток
- •3.2.1. Приготовление среды для криоконсервации
- •3.2.2. Сравнительная оценка эффективности криоконсервации культуры эмбриональных клеток свиной печени
- •3.3. Получение препарата и ксенотрансплантация
- •Глава 4. Оценка эффективности ксенотрансплантации криоконсервированной культуры клеток эмбриональной печени в коррекции острого токсического повреждения печени
- •4.1.Течение острого токсического повреждения печени на фоне метаболической коррекции
- •4.1.1. Ход эксперимента
- •4.1.2. Летальность в экспериментальных группах
- •4.2. Динамика биохимических показателей при остром токсическом повреждении печени под влиянием ксенотрансплантации криоконсер-вированной культуры эмбриональных клеток печени
- •4.2.1. Уровень альбумина в сыворотке крови
- •4.2.2. Уровень холестерина
- •4.2.3. Уровень билирубина
- •4.2.4. Активность индикаторных ферментов
- •4.3. Динамические изменения некоторых показателей системы гемостаза
- •4.3.1. Уровень фибриногена в плазме крови
- •4.3.2. Вязкость крови
- •4.3.3. Гематокрит
- •4.3.4. Агрегация тромбоцитов
- •Глава 5. Структурная оценка влияния ксенотрансплантации культуры эмбриональных клеток печени
- •5.1. Морфологическое исследование зоны трансплантации
- •5.2. Макроскопическая характеристика печени животных
- •5.3. Характеристика строения печени при световой микроскопии
- •5.4. Ультраструктура гепатоцитов при остром токсическом повреждении печени, корригированном ксенотрансплантацией культуры эмбриональных клеток печени
- •5.5. Содержание днк в ядрах гепатоцитов
- •Заключение
- •Практические рекомендации
- •Список использованной литературы
1.3. Трансплантация гепатоцитов в коррекции острой печеночной недостаточности
Если показания к применению метаболической клеточной коррекции при поражениях печени определены, то вопросы механизмов саногенного воздействия, технологии, а следовательно, технологии ТГЦ до сих пор дискутируются в дитературе. Обратимся к известным данным.
1.3.1. Способы приготовления гепатоцитов для трансплантации
В 1925 г. Харрисоном [50, 135] впервые был выделен изолированный ГЦ, который явился объектом морфологического, функционального и биохимического исследований. В 1943 г. W.Schneider и V.Potter [225] вновь сообщили о возможности разделения органа на изолированные клетки, которые способны осуществлять органоспецифические функции. В 1956 г. Sorrentino [58] применил гомогенат печени в биоискусственной поддерживающей системе с хорошим результатом, воспроизведенным в 1957-58 гг. Kimoto в экспериментах на гепатэктомированных животных, а затем и в клинике [22].
Систематические исследования в этом направлении начались с 1969 г., когда были разработаны методы получения изолированных клеток печени [83, 136].
Получение культуры клеток печени
Для получения чистой культуры изолированных ГЦ используются методики с применением механических и химических воздействий на ткань. Извлеченную печень перфузируют до достижения разрыва клеточных связей различными растворами, содержащими энзимы (трипсин, коллагеназу, эластазу, панкреатин, папаин) или вещества, связывающие двухвалентные ионы (этилен-диаминтетраацетат, версен, секвестрен, хелатон), в отдельности или в сочетании друг с другом [54, 65, 75].
После этого измельченную ткань печени в присутствии одного из названных дезагрегантов подвергают перемешиванию на магнитной мешалке, чтобы отделить взвесь чистых ГЦ. Технические приемы подобного выделения клеток детально описаны в ряде работ отечественных и зарубежных исследователей [3, 17, 23, 25, 35, 55, 56, 115, 137, 151, 184].
Широкое распространение получил комбинированный метод, разработанный M. Berry и D.Friend [83], в последующем модифицированный [18].
Метод включал в себя ферментативную диссоциацию и последующую механическую обработку ткани печени. Этот способ в зависимости от исходного состояния органа позволяет получить до 50-60 % клеток от массы печени, при этом 80% из них сохраняют свою морфологическую структуру и функциональную активность, т.е. участвуют в синтетических и метаболических процессах и сохраняют высокую интенсивность эндогенного дыхания [134].
Однако следует отметить, что во время процедуры разобщения значительная часть ГЦ теряется [87, 93, 115, 158]. Важным требованием является сохранение присущих in vivo культивируемой ткани метаболических функций [113].
При выделении зрелых свиных ГЦ пик клеточной пролиферации приходится на 4-5 день культивации, тогда как 6-10 дни показали увеличение числа фибробластов в культуре. Измерение детоксикационных функций выявляет пик активности на 4-5 сутки и постепенное снижение к 10 суткам [184, 188].
Важным показателем является жизнеспособность выделенных клеток. При выделении клеток из печени взрослой свиньи этот показатель сорставляет 97-99% [178, 184]. Из 1 г ткани печени взрослой свиньи получают 1,92±0,5 х 107 гепатоцитов при жизнеспособности 93% [205].