- •Опросник п/к инъекции
- •В/м инъекции
- •В/в инъекции
- •Установка в/в катетера
- •Венесекция
- •Взятие крови
- •Фиксация собак
- •Фиксация кошек
- •Фиксация экзотических животных
- •3. Необходимое оборудование:
- •4. Подготовка животного:
- •Дача таблеток или жидкого лекарства.
- •Катетеризация мочевого пузыря
- •Взятие анализов мочи
- •Цистоцентез
- •Бритье животных для операций, узи живота, эхо
- •Установка капельницы
- •Подкожная инфузия
- •Вскрытие абсцесса подкожной клетчатки
- •Определение вск (время свертываемости крови)
- •Механизмы действия местных анестетиков
- •Инфильтрация:
- •Кислородотерапия, работа с кислородным баллоном
- •Оказание первой помощи владельцам (обмороки, укусы и пр)
- •Способы купирования гипогликемии:
- •Поддержание порядка. Правила поведения в кабинетах 1 и 2.
- •Правила работы в кабинете инфузионной терапии.
- •Правила работы в узи-кабинете.
- •Правила работы в рентген-кабинете.
- •Правила поведения в ординаторской и раздевалке клиники.
- •Правила ухода из стационара по личным нуждам.
- •Ответ на телефонный звонок в отсутствии врача
- •Правила фиксации информации о проведенных процедурах
- •Правила асептики и антисептики.
- •Правила ухода за машинкой для стрижки животных.
- •Правила работы в компьютерной программе Медиалог:
- •Санация перианальных синусов
- •Десмургия
- •Общие правила работы с анализами:
- •1.Клинический анализ крови
- •2. Биохимический анализ крови
- •Газы крови
- •Гепаринизированный шприц для газов крови
- •Коагулограмма
- •5. Анализ кала на яйца глистов и цисты простейших
- •Постановка лекарственной/очистительной клизмы.
- •Измерение чсс, чдд, температуры, снк, оценка ад по пульсу
- •Интубация трахеи
- •Кюретаж фолликулов третьего века и препуция
- •Пироплазмоз
- •Аускультация и перкутирование грудной клетки
- •Классификация аномальных (побочных) респираторных звуков на основе классификации Американского общества изучения грудной клетки.
- •Аускультация и перкутирование брюшной полости
- •Основы пальпации животных – поверхностные лимфоузлы, брюхо, кожа
- •Основы осмотра животного
- •Установка центрального венозного катетера
- •Санация зубов и ротовой полости
- •Кастрация котов
- •Овариогистерэктомия кошек и сук
- •Кастрация кобелей
- •Лапароцентез и лаваж брюшной полости
- •Торакоцентез при гидротораксе и пневмотораксе
- •Цереброспинальная пункция
- •Правила подключения к кардиомонитору. Выставляемые параметры.
- •Выписывание и получение расходных материалов
- •Правила кормления
- •Правила выгула
- •Правила использования и замены пеленок
- •Закрытие лапаротомной раны
- •Обработка послеоперационной раны и снятие кожных швов
- •Глубокий соскоб
- •Поверхностный соскоб
- •Взятие цитологии с поверхности кожи
- •Цитология из нсп
- •Аспирационная цитология
- •Трихоскопия
- •Тест с влажной бумагой
- •Исследование лампой Вуда
- •Санация ушного прохода
- •Промывание физиологическим раствором
- •Правила обработки и хранения насадок для отоскопа и лезвий для соскобов
- •Взятие посева на дерматофитию
- •Взятие материала для диагностики отодектоза
- •Окрашивание цитологии
- •Подготовка соскобов к микроскопии
- •Исследование соскобов и трихоскопия
- •Исследование цитологии
- •Малая дексаметазоновая проба.
- •Предоперационная подготовка животных. Премедикация.
- •Подготовка операционной. Работа операционной сестры (ассистента)
- •Патологическая анатомия
- •Принципы терапии болезней глаз путем введения глазных капель, мазей
- •Техника переливания крови
- •Кардиология: интерпретация экг. Слр. Прямой массаж сердца. Дефибрилляция.
- •Декомпрессия желудка. Зонды. Промывание желудка.
- •Правила разведения Перекиси водорода 3%
Взятие посева на дерматофитию
Необходимое оборудование:
чашка Петри со средой
запечатанная зубная щетка
москит
Этапы проведения:
Если есть поражения на коже, москитом выдернуть волоски с пораженной области, взять корочки или чешуйки и разместить на поверхности среды, немного погружая их в среду. Метод Макензи: Зубной щеткой собрать материал со всего тела в подставленную чашку Петри. Также максимально снять материал с зубной щетки и поместить его в чашку. Подписать чашку. Заклеить скотчем или пластырем, чтобы не открылась крышка. Перевернуть чашку средой кверху.
Взятие материала для диагностики отодектоза
Необходимое оборудование:
Лоток:
стекло
маркер для подписания стекла
вазелиновое масло
ватные палочки
игла или лезвие
Этапы проведения:
Ватной палочкой взять материал из слухового прохода или обоих проходов, перенести материал в каплю вазелинового масла на стекле, при необходимости помогая иглой или лезвием. Подписать стекло.
Окрашивание цитологии
Необходимое оборудование:
раствор для фиксации
зажигалка
набор растворов для быстрой окраски
фильтровальная бумага
Этапы проведения:
Шаг 1. Фиксация материала.
Для материала на скотче – не нужна. Край скотча с материалом – свободен, остальная часть скотча – закреплена на стекле, как держателе. Перед помещением в краску свободный край скотча немного загнуть.
Материал из слуховых проходов – несколько секунд прогреть над пламенем зажигалки.
Отпечатки – поместить на 3-5 секунд в раствор для фиксации.
Шаг 2. Окрашивание красным красителем.
Зафиксированное стекло поместить на 2-3 минуты в краситель или 10-15 раз окунуть стекло в краситель. Аккуратно просушить стекающую краску фильтровальной бумагой, чтобы не смешивалась со следующей краской.
Шаг 3. Окрашивание синим красителем.
Поместить стекло на 2-3 минуты в краситель или 10-15 раз окунуть. Если раствор не новый, времени для окраски может потребоваться больше.
Шаг 4. Промыть стекло под струей воды или в контейнере с водой.
Шаг 5. просушить стекла. Излишек воды аккуратно промокнуть фильтровальной бумагой. Можно использовать фен для просушки.
Подготовка соскобов к микроскопии
Необходимое оборудование:
вазелиновое масло
стекло с материалом
покровные стекла
Этапы проведения:
Накрыть материал на стекле покровным стеклом. При недостатке вазелинового масла – аккуратно добавить, поднеся пипетку к краю покровного стекла – полости под стеклом заполнятся маслом.
Исследование соскобов и трихоскопия
Исследуются при помощи микроскопа с опущенным конденсором и закрытой диафрагмой – для увеличения контрастности при помощи объективов с увеличением 4Х или 10Х. При необходимости исследования более мелких структур (споры дерматофитов) используют объектив с увеличением 40Х (без использования иммерсионного масла!).
Материал под микроскопом исследуется полностью, перемещая стекло последовательно по вертикальной или горизонтальной оси от одного края покровного стекла до другого.